功能丧失突变RyR2-A4860G在小鼠中导致的心律失常表型与钙释放缺乏综合征不符Loss-of-Function Mutation RyR2-A4860G Confers an Arrhythmia Phenotype in Mice Inconsistent With Calcium Release Deficiency Syndrome | Circulation: Arrhythmia and Electrophysiology

环球医讯 / 心脑血管来源:www.ahajournals.org美国 - 英语2026-01-06 01:41:11 - 阅读时长10分钟 - 4572字
本研究探讨了RyR2-A4860G功能丧失突变在小鼠模型中的心律失常表型特征,发现该突变对肾上腺素刺激表现出敏感性,与典型的钙释放缺乏综合征(CRDS)理论描述不符,表明RyR2功能丧失突变存在显著的表型异质性;研究结果显示,在肾上腺素和咖啡因刺激下,40%的RyR2-A4860G小鼠出现室性二联律或双向性心动过速,而用于定义CRDS的RyR2-D4646A小鼠在同样刺激下却抵抗心律失常,这一重要发现挑战了将所有功能丧失突变简单归为单一综合征的观点,对心律失常的精准医疗、风险分层和个体化治疗策略具有深远意义,提醒临床医生不应过度概括心律失常机制和诊断工具,而应关注不同突变亚型的特异性表现。
心律失常钙释放缺乏综合征RyR2功能丧失突变儿茶酚胺敏感性多形性室性心动过速室性心律失常肾上腺能刺激表型异质性精准医学野生型小鼠CRDS
功能丧失突变RyR2-A4860G在小鼠中导致的心律失常表型与钙释放缺乏综合征不符

兰尼碱受体2(RyR2)突变是应激诱发心律失常和猝死的明确病因,RyR2是心脏中主要的钙释放通道。大多数已确定的RyR2突变属于功能获得型,导致通道过度活跃、舒张期钙泄漏和儿茶酚胺敏感性多形性室性心动过速(CPVT)。CPVT患者心脏结构正常,但在体力或情绪应激下可能发展为威胁生命的室性心律失常(VA)。因此,应激测试可作为重要的诊断工具和评估治疗效果的机制。

早期关于CPVT的报告也描述了后来被归类为功能丧失(LoF)的RyR2突变,因其通道活性降低。尽管已对LoF突变进行了研究,但其致心律失常机制仍未完全阐明。最近定义了一种新的临床实体——钙释放缺乏综合征(CRDS),用于描述携带这些突变的患者表型。CRDS与室性心律失常和猝死相关,但患者表现出更为异质的临床表现,可能涉及心室颤动且应激测试呈阴性。

CRDS最初被提出并非源于应激诱发的舒张期钙泄漏,而是源于广泛的电生理重塑和特定搏动模式。这一机制的主要支持来自对单个LoF小鼠RyR2-D4646A的研究,该小鼠对儿茶酚胺诱发的心律失常具有抵抗力,但在心内起搏反应中持续发展为室性心律失常。然而,对携带LoF突变患者的临床评估显示,心室颤动发作前常有应激事件,且他们对β受体阻滞剂治疗有反应,强调了肾上腺能刺激在该疾病中的潜在作用。

为扩展我们对CRDS的理解并探索LoF突变间的表型多样性,我们研究了携带RyR2-A4860G(AG)的小鼠心律失常易感性,这是一种经过深入研究的LoF突变,最初与CPVT相关,后被重新归类为CRDS。AG小鼠心脏结构正常。为进行比较,我们研究了携带RyR2-H2464D(HD)通道的CPVT小鼠,这是一种强功能获得突变,以及野生型(WT)C57BL/6J小鼠。HD小鼠也具有正常的心脏结构。实验已获机构IACUC批准(方案M005944)。本研究支持的所有数据可根据合理要求从通讯作者处获取。

我们首先使用异丙肾上腺素(2 mg/kg,图[A])测试肾上腺能刺激。所有组均表现出正性变时反应,尽管HD小鼠在异丙肾上腺素后心率低于WT对照组(图[B])。没有任何一组发展为室性心律失常(图[C]),这与已知的麻醉小鼠中此肾上腺能挑战的局限性一致。随后,我们给予更强烈的致心律失常混合物(肾上腺素2 mg/kg + 咖啡因120 mg/kg),这广泛用于揭示CPVT表型(图[A]和[D])。WT小鼠未显示室性心律失常,而100%的HD小鼠发展为持续性多形性或双向性心动过速。值得注意的是,40%的AG小鼠也表现出室性二联律或双向性心动过速,表明其对肾上腺能刺激敏感,表型更符合CPVT。相比之下,用于定义CRDS的RyR2-D4646A小鼠先前已被证明即使在更高剂量的肾上腺素/咖啡因下也能抵抗室性心律失常。这些不同的反应突显了LoF突变的异质性,并反驳了"一刀切"的CRDS表型观点。

图. 携带RyR2中LoF(RyR2-A4860G)或GoF(RyR2-H2464D)突变的小鼠心律失常易感性 12至24周龄的杂合子RyR2-A4860G(AG)、纯合子RyR2-H2464D(HD)和C57Bl/6J(野生型[WT])对照小鼠随机分配至3种心律失常挑战中的一种,如下所述。小鼠用异氟烷(1.5-2%)麻醉,维持在37°C,并使用I导联和II导联体表心电图监测。所示所有轨迹均为II导联。实验包括相同比例的雄性和雌性小鼠。A,麻醉小鼠在基础条件、腹腔注射异丙肾上腺素(Iso,2 mg/kg)后2分钟以及腹腔注射致心律失常混合物(肾上腺素[Epi,2 mg/kg]和咖啡因[Caff,120 mg/kg])后的代表性1秒体表心电图轨迹。基础心电图记录10分钟,注射后进行30分钟心律失常监测。星号表示异位搏动。B,异丙肾上腺素注射前后心率的量化。每只小鼠的反应由线条连接。所有组均显示正性变时反应;然而,HD小鼠在异丙肾上腺素后心率低于WT对照组(双向重复测量ANOVA,Holm-Sidak)。C,异丙肾上腺素注射后室性心律失常(VA)发生率。没有任何一组发展为室性心律失常。D,致心律失常混合物注射后室性心律失常发生率。100%的HD小鼠显示以多形性和双向性室性心动过速(BDVT)为特征的室性心律失常。40%的AG小鼠也显示以室性二联律和双向性心动过速为特征的室性心律失常(Fisher精确检验)。E,八极1.1F电生理导管放置在麻醉小鼠右心室(RV)中的示意图。导管通过右颈静脉推进,位置根据4个双极心内电极的信号进行调整,如图中颜色编码所示。2个远端电极用于心室起搏(白色)和心室电图监测(绿色,星号)。此图在BioRender中创建。F,心内刺激方案。Sun等人开发的长脉冲、长间歇、短耦联(LBLPS)刺激方案每15秒应用一次。短耦联间隔在连续迭代中从78 ms减少到18 ms,每次减少4 ms。为评估肾上腺能刺激的影响,在腹腔注射异丙肾上腺素(2 mg/kg)后2分钟重复相同的起搏方案。G,接受LBLPS心内起搏的WT小鼠的体表心电图(顶部,后)和心室电图(底部,绿色)的代表性1秒轨迹。箭头表示体表心电图中的P波和R波,以及心室电图中的心房(A)和心室(V)信号。在短耦联刺激后,基础条件下恢复窦性心律。在异丙肾上腺素作用下,小鼠发展为约0.5秒的心室颤动(VF)发作,然后恢复为窦性心律。H,LBLPS起搏期间室性心律失常发生率。各组反应之间无差异(所有比较的P=1.000,Fisher精确检验)。

为进一步研究,我们应用了长脉冲、长间歇、短耦联(LBLPS)心内起搏方案。LBLPS在100%的RyR2-D4646A小鼠中可靠地诱发室性心律失常。有限的临床证据也表明此序列可诱发携带某些LoF突变患者的室性心律失常。我们将导管置于麻醉小鼠的右心室,以传递心内起搏并记录心室电图,同时监测体表心电图(图[E]、[F]和[G])。仅LBLPS在单个WT和AG小鼠中诱发孤立的、非持续性心室颤动发作,在HD小鼠中未诱发室性心律失常(图[H])。我们在异丙肾上腺素(2 mg/kg)刺激后重复LBLPS方案,以模拟肾上腺能应激。所有组显示发展为室性心律失常的易感性增加;然而,AG小鼠的反应与WT和HD小鼠无区别(图[H])。这些结果表明,LBLPS对在此LoF模型中诱发心律失常缺乏敏感性。

我们的数据与现有报告一起强烈表明,并非所有LoF RyR2突变都在统一的心律失常模型下显示一致性。表达RyR2-D4646A LoF通道的小鼠模型支持CRDS心律失常表型,但表现出电生理重塑。AG不显示这些特征,也不可预测地响应LBLPS;相反,它在CPVT挑战下易导致心律失常。我们最近报告了一种新的细胞心律失常机制,某些LoF突变可能通过该机制导致双向性心动过速。在临床中,有报告显示即使是携带相同LoF变异的患者也存在表型异质性和对LBLPS的反应差异。此外,LoF突变已与复极延长和心肌病相关联,进一步扩展了疾病谱的复杂性。尽管对RyR2突变的研究已有20多年,但致心律失常机制的全范围仍难以捉摸。随着精准医学在心律失常治疗中变得越来越重要,区分RyR2突变亚型对风险分层和治疗至关重要。我们的发现强调了与LoF突变相关的表型异质性,并警示不要过度概括心律失常机制和诊断工具。

致谢

作者感谢威斯康星大学麦迪逊分校医学院和公共卫生学院的Carly Sobol博士和Farhan Raza博士对本文的反馈。

脚注

非标准缩写和首字母缩写

AG:RyR2-A4860G

CPVT:儿茶酚胺敏感性多形性室性心动过速

CRDS:钙释放缺乏综合征

HD:RyR2-H2464D

LBLPS:长脉冲长间歇短耦联起搏方案

LoF:功能丧失突变

RyR2:兰尼碱受体2

VA:室性心律失常

WT:野生型

参考文献

  1. Sun B, Yao J, Ni M, Wei J, Zhong X, Guo W, Zhang L, Wang R, Belke D, Chen YX, et al. Cardiac ryanodine receptor calcium release deficiency syndrome. Sci Transl Med. 2021;13:eaba7287. doi: 10.1126/scitranslmed.aba7287
  2. Kallas D, Roberts JD, Sanatani S, Roston TM. Calcium release deficiency syndrome: a new inherited arrhythmia syndrome. Card Electrophysiol Clin. 2023;15:319–329. doi: 10.1016/j.ccep.2023.05.003
  3. Zhao YT, Valdivia CR, Gurrola GB, Powers PP, Willis BC, Moss RL, Jalife J, Valdivia HH. Arrhythmogenesis in a catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia mutation that depresses ryanodine receptor function. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015;112:E1669–E1677. doi: 10.1073/pnas.1419795112
  4. Stempien A, Josvai M, de Lange WJ, Hernandez JJ, Notbohm J, Kamp TJ, Valdivia HH, Eckhardt LL, Maginot KR, Ralphe JC, et al. Identifying features of cardiac disease phenotypes based on mechanical function in a catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia model. Front Bioeng Biotechnol. 2022;10:873531. doi: 10.3389/fbioe.2022.873531
  5. Zheng J, Ponce-Balbuena D, Rios Perez EB, Xiao L, Dooge HC, Valdivia HH, Alvarado FJ. Preventing the phosphorylation of RyR2 at canonical sites reduces Ca(2+) leak and promotes arrhythmia by reactivating the I(Na) current. Nat Cardiovasc Res. 2025;4:976–990. doi: 10.1038/s44161-025-00693-3

【全文结束】

大健康
大健康